电穿孔(Electroporation，EP)技术出现于20世纪80年代中期。电穿孔是一个物理过程，细胞在高电压场强的作用下，细胞膜发生暂时的重新排列，结果使细胞膜具有临时性的大分子可通透性，可从周围环境中摄入包括核酸、蛋白质、碳水化合物一类的大分子以及其他一些小分子。
与传统的瞬转方法：原生质体融合法，磷酸钙与DNA或重组噬菌体共沉淀法，DEAE-葡聚糖法，脂质体法方法相比，电穿孔技术具有简单易行、重复性好、效率较高、电参数容易控制和调整、作用机理相对比较清楚等优点。近年来，脉冲电场对细胞膜的电穿孔效应获得了广泛深入的研究，在生物、医学治疗方面有了重大应用。
欢迎了解我们的电转仪。
如何应用上电转仪呢？
一、试剂耗材准备
细胞培养基DMEM或1640、FBS、0.25%胰蛋白酶 (自配，无菌)、PBS (自配，无菌)、电转缓冲液（自主研发）。
细胞、用具准备电转仪器、电转杯（1mm）、电转液、毛细管枪头、6孔板、倒置荧光显微镜、移液器。
二、细胞实验流程
1、细胞准备：细胞消化，用PBS处理成细胞悬液计数，离心（1000rpm，5min）弃PBS；用电转液重悬细胞，最终加入的细胞悬液为每个电转杯85ul，细胞量在1×105-1×106个；
2、细胞悬液中加入质粒8.5ug(终浓度10ug/mL），混匀；
3、毛细管枪头移取85uL到电转杯，从底部加入，保证没有气泡，气泡会影响电转效果；
4、调好仪器参数，逐个电转，电转结束后迅速加入少量培养基；
5、六孔板中提前加入2mL完全培养基，电转细胞悬液吸出加入到孔板，37℃培养箱静置培养24-48h，观察荧光蛋白表达，计算电转效率；电转后第2天观察细胞存活率。
三、电转流程图
1、仪器连接电源，打开电源键，设置脉冲个数、脉冲电压、脉冲宽度；
2、移液管转移HYYTM电转液重悬的细胞到电转杯；
3、拉出卡槽，轻轻放入电转杯，卡槽放回原位；
4、点击start，充电-放点；
5、转移样本到培养板。
如此，我们的细胞电转实验就完成了，超级方便快捷的。
一定有小伙伴担心转染效率不行，话不多说，直接上图吧！
